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抗體標(biāo)記檢測(cè)方法指南

更新時(shí)間:2026-01-04      點(diǎn)擊次數(shù):130

科技文獻(xiàn)中有很多抗體標(biāo)記方法指南,我們往往難以選擇方法。本指南可以幫助您更好的理解標(biāo)準(zhǔn)化學(xué)標(biāo)記方法及它們的優(yōu)缺點(diǎn),同時(shí)還介紹了 Lightning-Link一步法抗體標(biāo)記技術(shù)。該技術(shù)極大簡(jiǎn)化了抗體標(biāo)記步驟,利用該技術(shù)標(biāo)記抗體不需要您具備太多化學(xué)方面的知識(shí),并且手頭操作時(shí)間僅需短短的30秒!

抗體與標(biāo)記物

在多種免疫實(shí)驗(yàn)(流式細(xì)胞術(shù), ELISA, western blotting, 免疫組化等)中,抗體被廣泛應(yīng)用于檢測(cè)和定量抗原。直接識(shí)別抗原的抗體被稱(chēng)為一抗(primary antibody),賦予檢測(cè)的特異性。大多數(shù)免疫檢測(cè)中還需加入標(biāo)記物,賦予實(shí)驗(yàn)可檢測(cè)性。標(biāo)記物包括有機(jī)染料、熒光蛋白、有色微粒和酶。

直接檢測(cè)法 Vs.間接檢測(cè)法

包含標(biāo)記物的免疫檢測(cè)一般有直接法和間接法兩種形式。直接檢測(cè)法中,標(biāo)記物通過(guò)共價(jià)鍵直接連接到一抗上。而對(duì)于間接檢測(cè)法,標(biāo)記物則是共價(jià)連接到與一抗特異性結(jié)合的二抗上。間接法檢測(cè)包括兩步:步,用未標(biāo)記的一抗進(jìn)行孵育,抗體與抗原結(jié)合(若存在抗原),洗去未結(jié)合的抗體(一般3~5次),第二步則是加入標(biāo)記二抗孵育(通常1小時(shí)),洗滌去掉未結(jié)合的二抗,然后量化結(jié)合在一抗上的標(biāo)記物。

在直接法中,標(biāo)記物直接與一抗共價(jià)結(jié)合,因此僅需與含有抗原的樣本孵育這一步驟,而且只需一次洗滌,而間接法則需要兩輪孵育與洗滌步驟。直接法簡(jiǎn)化了試驗(yàn)的流程,降低了試驗(yàn)的變異性,增加了數(shù)據(jù)的可靠性。然而一抗的共價(jià)修飾可以導(dǎo)致抗體親和力的改變,這種情況的出現(xiàn)與標(biāo)記二抗帶來(lái)的非特異性結(jié)合的問(wèn)題相比而言,顯得無(wú)關(guān)緊要。下表列舉出了直接法與間接法的主要優(yōu)缺點(diǎn)比較。


表.直接法與間接法的比較

方法

優(yōu)點(diǎn)

缺點(diǎn)

直接法

操作簡(jiǎn)單,結(jié)果可靠;

僅需使用一抗,檢測(cè)快速;

無(wú)二抗的非特異性結(jié)合。

由于標(biāo)記可能導(dǎo)致一抗的免疫反應(yīng)性降低;

信號(hào)放大作用較弱。

間接法

一抗含有多個(gè)標(biāo)記二抗可結(jié)合的表位,因而靈敏度升高,信號(hào)放大作用較強(qiáng)。

二抗可能發(fā)生非特異性結(jié)合;

孵育及洗滌步驟增多。


既然直接標(biāo)記法具有很多優(yōu)點(diǎn),但為何眾多的免疫分析仍采用間接法呢?原因是市場(chǎng)上帶有標(biāo)記的一抗較少,而且直接標(biāo)記一抗較困難,這在過(guò)去也許是您的困擾,但是當(dāng)您讀到本篇指南的后時(shí)就會(huì)對(duì)抗體標(biāo)記充滿(mǎn)信心。


抗體標(biāo)記方法

您僅需理解基本的化學(xué)原理,哪些基團(tuán)發(fā)生反應(yīng),根據(jù)化學(xué)結(jié)合物的種類(lèi)去選擇合適的試劑,而不需要糾結(jié)化學(xué)結(jié)構(gòu)和完整的化學(xué)名稱(chēng)。抗體和所有蛋白一樣,是由氨基酸殘基組成的。蛋白的氨基基團(tuán)(N-末端及賴(lài)氨酸殘基的側(cè)鏈)通常被用于共價(jià)鏈接標(biāo)記物。盡管在文獻(xiàn)中報(bào)道了多種多樣的標(biāo)記方法和成百上千的化學(xué)修飾試劑,然而實(shí)際上只有少數(shù)重要的方法和試劑。無(wú)論何種方法,幾乎毫無(wú)例外的都是將標(biāo)記物共價(jià)連接到抗體分子的賴(lài)氨酸殘基上。

以下是幾種主要的抗體標(biāo)記方法:

1.琥珀酰酯 (NHS)

當(dāng)使用熒光染料標(biāo)記時(shí),通??少?gòu)買(mǎi)內(nèi)配有NHS琥珀酰酯(也稱(chēng)為琥珀酰亞胺酯)的活化標(biāo)記物。在適當(dāng)條件下,活化的染料可與抗體分子反應(yīng)(抗體分子通常含有多了賴(lài)氨酸基團(tuán))而形成結(jié)合物。根據(jù)標(biāo)記抗體和游離染料的大小不同,過(guò)量的活性染料可通過(guò)層析法去掉,純化的步驟會(huì)導(dǎo)致一部分標(biāo)記抗體的損失,但是為了避免實(shí)驗(yàn)的高背景,這些純化步驟是必要的。

2.碳二亞胺(Carbodiimides)法

這類(lèi)試劑(常見(jiàn)的如EDC)在氨基和含羧基的分子間形成共價(jià)連接。碳二亞胺活化羧基,活化的中間體隨后被氨基(抗體分子的賴(lài)氨酸殘基)吸附。碳二亞胺通常用于連接抗體和羧化的顆粒(如乳膠顆粒、磁珠),以及其他羧化的表面如微孔板。碳二亞胺很少用于將蛋白標(biāo)記物偶聯(lián)到抗體上,因?yàn)檫@兩種分子都含有氨基(賴(lài)氨酸)和羧基。大多數(shù)碳二亞胺試劑都不溶于水,因此它們主要用于有機(jī)合成化學(xué),比如生產(chǎn)NHS活性染料。真正用于蛋白/抗體標(biāo)記的碳二亞胺試劑為EDC(也稱(chēng)為EDAC),常以鹽酸鹽的形式出售。

3.過(guò)碘酸鈉(Sodium periodate)法

過(guò)碘酸鈉是一種用于活化辣根過(guò)氧化物酶的強(qiáng)氧化劑。這種過(guò)碘酸鹽與糖鏈反應(yīng)產(chǎn)生能與抗體的賴(lài)氨酸殘基反應(yīng)的醛基。由于HRP分子本身含有很少的賴(lài)氨酸,因而相對(duì)容易獲得抗體-HRP結(jié)合物,且無(wú)明顯的HRP多聚化發(fā)生。

4. 異硫氰酸鹽(Isothiocyanate)法

該方法值得特別一提是因?yàn)?/span>FITC(異硫氰酸熒光素)的重要意義。FITC作為抗體和蛋白的標(biāo)記物已使用了很多年。異硫氰酸鹽較NHS琥珀酰亞胺酯穩(wěn)定,因此在保存中不易分解,但是與抗體的反應(yīng)性較差。FITC不溶于水,須溶于有機(jī)溶劑。該方法的局限性在于反應(yīng)需在PH9.5或更高的條件下進(jìn)行,否則標(biāo)記反應(yīng)會(huì)非常緩慢,然而一些單克隆抗體在高PH條件下可能會(huì)被破環(huán)。

5.異(基)雙功能試劑 (Heterobifunctional reagents)

當(dāng)標(biāo)記物為蛋白分子(如堿性磷酸酶AP、藻紅蛋白PE)時(shí),由于抗體和標(biāo)記分子都含有大量賴(lài)氨酸殘基,因此標(biāo)記流程略為復(fù)雜,可能發(fā)生預(yù)期外的其他反應(yīng)。在這種情況下,通常需要對(duì)其中一個(gè)分子(如抗體)的一些賴(lài)氨酸進(jìn)行修飾,以此創(chuàng)造一個(gè)新的反應(yīng)基團(tuán)(X),而標(biāo)記物上的賴(lài)氨酸作為另一個(gè)反應(yīng)基團(tuán)(Y)。當(dāng)抗體與標(biāo)記物混合時(shí),利用雙功能試劑引入Y基團(tuán),隨之與X基團(tuán)發(fā)生反應(yīng),從而形成異二聚體結(jié)合物(即標(biāo)記抗體)。該方法的主要缺點(diǎn)是標(biāo)記前需要一些分離步驟將X標(biāo)簽結(jié)合到抗體上,這些分離步驟對(duì)標(biāo)記反應(yīng)是不利的。

緩沖液及添加物--抗體標(biāo)記的關(guān)鍵因素

抗體溶液中除抗體蛋白分子外,可能還含有少量其他物質(zhì)如緩沖液、鹽、或其他蛋白及添加物。添加物對(duì)不同標(biāo)記方法的影響程度不同,但絕大多數(shù)的標(biāo)記抗法都是利用抗體分子上的賴(lài)氨酸殘基,因此在標(biāo)記反應(yīng)中應(yīng)避免加入含有伯胺的緩沖液或添加物。有時(shí),標(biāo)記反應(yīng)前需要重新純化抗體,尤其當(dāng)抗體中含有穩(wěn)定蛋白(BSA)或低分子量物質(zhì)(氮化鈉、Tris、甘氨酸)時(shí)。甘氨酸和Tris緩沖液常用來(lái)純化和中和抗體,后加入氮化物來(lái)防止微生物的滋生。純化實(shí)驗(yàn)中常用低PH值的檸檬酸洗脫抗原親和柱上的抗體,然而檸檬酸會(huì)對(duì)碳化二亞胺參與的反應(yīng)產(chǎn)生嚴(yán)重的干擾。因此,純化過(guò)的抗體在標(biāo)記前需要進(jìn)行透析。需要特別注意的是,透析時(shí)如能更換2-3次緩沖液,那么去除小分子雜質(zhì)的效率更高。這并不意味著您需要準(zhǔn)備3倍或更大量的緩沖液一次性來(lái)透析,恰恰相反,多次透析延長(zhǎng)了透析的時(shí)間,從而達(dá)到更好的雜質(zhì)去除效果。如用1L的緩沖液透析3次的效果遠(yuǎn)比用5L的緩沖液透析一次的效果好。如果透析后需要加入氮化合物,盡可能使用低的濃度(如0.02%)或者將抗體以濃縮形式保存。例如,在5mg/ml 抗體中加入0.02%氮化物,若后續(xù)標(biāo)記實(shí)驗(yàn)使用1mg/ml 抗體時(shí),氮化物的濃度則降低為0.004%;然而如果將0.1% 氮化物加入0.5 mg/ml抗體溶液中,毫無(wú)疑問(wèn)會(huì)對(duì)標(biāo)記反應(yīng)產(chǎn)生嚴(yán)重的干擾。

抗體濃度及純度

大多數(shù)標(biāo)記反應(yīng)對(duì)抗體都有一個(gè)純度要求(如>90%,>95%)和濃度要求(至少0.5mg/ml)。市售的許多商業(yè)化抗體一般都是適用于標(biāo)記的純化形式,但并非所有情況都如此,有些抗體常以雜交瘤組織培養(yǎng)上清(TCS)、腹水或血清等形式出售。TCS通常含有多種其他蛋白和培養(yǎng)基營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)(如氨基酸),這對(duì)于標(biāo)記是個(gè)非常大的問(wèn)題。如果您使用的是TCS,那么純化(如過(guò)蛋白A柱)步驟則是必需的。腹水和血清原液中的抗體濃度較TCS中的抗體濃度高,但它們同樣也是不純的,含有高濃度的干擾物質(zhì),進(jìn)一步的純化往往也是必要的。




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